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May 31, 2023

Rilevazione elettrochimica dell'acido urico nella saliva umana non diluita utilizzando elettrodi integrati in carta uricasi

Rapporti scientifici volume 12, numero articolo: 12033 (2022) Citare questo articolo

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In questo studio, introduciamo un sensore elettrochimico integrato in carta immobilizzata con uricasi (UOx-carta) per il rilevamento dell'acido urico (UA) nella saliva. L'UOx è stato immobilizzato sulla zona di rilevamento nel substrato di carta con motivo a cera. Questa carta UOx è stata integrata con un elettrodo di carbonio serigrafato modificato in blu di Prussia dopo l'elettropolimerizzazione dell'o-fenilendiammina per costruire una cella elettrochimica per piccoli volumi (20 μL) di campioni. Innanzitutto, abbiamo ottimizzato le condizioni di fabbricazione della carta UOx. Successivamente, la risposta amperometrica del sensore UA elettrochimico basato su carta UOx è stata analizzata utilizzando una concentrazione nota di soluzione standard UA nella saliva artificiale a un potenziale applicato di -0,1 V (rispetto all'elettrodo pseudo-riferimento Ag). Il sensore UA elettrochimico basato su carta UOx ha mostrato una sensibilità di 4,9 μA·mM−1 in un intervallo lineare da 50 a 1000 μM (R2 = 0,998), elevata selettività e buona riproducibilità, nonché un limite di rilevamento di 18,7 μM ( 0,31 mg/dL) UA. Infine, abbiamo quantificato i livelli di UA nei campioni di saliva non diluita di controlli sani (n = 20) e di pazienti affetti da gotta (n = 8). I livelli erano correlati con quelli misurati con test enzimatici convenzionali dell'UA salivare e con i livelli sierici di UA. Il sensore UA elettrochimico basato su carta UOx è uno strumento facile da usare e conveniente per valutare i livelli di UA salivari.

L'acido urico (UA), il prodotto finale del metabolismo delle purine nel corpo umano, svolge un ruolo importante in una varietà di condizioni fisiologiche e patologiche, inclusa la gotta1,2,3. L'UA è un antiossidante ed è stato segnalato che l'ipouricemia è associata a malattie neurologiche immunomediate o degenerative come la sclerosi multipla, il morbo di Parkinson o il morbo di Alzheimer3. Anche la stomatite aftosa ricorrente e il lichen planus orale erano associati a bassi livelli di UA salivare4,5. Tuttavia, l’iperuricemia contribuisce allo sviluppo e alla progressione della gotta, della sindrome metabolica, della malattia renale cronica o delle malattie cardiovascolari3. Sebbene l'iperuricemia non sempre induca la gotta e la diagnosi di gotta non si basi solo sull'iperuricemia, la gotta si sviluppa in soggetti con iperuricemia portando alla deposizione di cristalli di urato monosodico nei tessuti. Recenti linee guida per la gestione della gotta raccomandano che la terapia ipouricemizzante sia ottimizzata per raggiungere e mantenere un livello sierico di UA < 5-6 mg/dL, ma non < 3 mg/dL6,7. Pertanto, il monitoraggio dell’UA sierica è indispensabile per la diagnosi, il trattamento e il follow-up dell’iperuricemia e della gotta. Tuttavia, la venupuntura è invasiva e può causare complicazioni tra cui lesioni e sanguinamento. Inoltre, l'analisi dell'UA sierica richiede un ambiente di laboratorio che utilizzi apparecchiature specializzate.

La diagnostica salivare ha attirato maggiore attenzione nei campi che utilizzano test point-of-care (POCT) e nelle applicazioni cliniche per monitorare le malattie frequentemente e facilmente, oltre a prevedere i risultati post-trattamento perché la saliva riflette lo stato fisiologico e patologico del corpo8 ,9. L'UA viene prodotta principalmente nel fegato e nell'intestino. La maggior parte dell'UA viene eliminata attraverso i reni e l'intestino attraverso i trasportatori dell'urato. Tuttavia, i trasportatori di anioni organici e urati sono espressi anche nelle ghiandole salivari10. Inoltre, diversi studi clinici hanno riportato una relazione lineare tra i livelli sierici e salivari di UA nella maggior parte dei casi, suggerendo il potenziale della determinazione dell'UA salivare come alternativa agli esami del sangue1,2,11,12. Per il rilevamento dell'UA salivare sono stati sviluppati vari metodi analitici tra cui la cromatografia liquida ad alte prestazioni (HPLC)13, l'elettroforesi capillare (CE)14 e kit di test colorimetrici enzimatici15,16,17,18. Tuttavia, non sono adatti per l’uso personale quotidiano perché di solito richiedono molto tempo e strumenti costosi ed esperti. Sebbene alcuni kit di test enzimatici disponibili in commercio possano essere utilizzati per vari tipi di matrici biologiche come saliva, siero e urina2, essi possono essere influenzati da altre interferenze come la vitamina C, i lipidi o la perossidasi endogena presenti nei campioni biologici ed eventualmente causare risultati falsi2,19,20,21,22. Inoltre, hanno una data di scadenza breve perché la perossidasi contenuta nei reagenti è incompatibile con conservanti come la sodio azide23. Di conseguenza, un reagente scaduto può comportare una diminuzione della sensibilità2,24.

 + 0.65 V) to measure the hydrogen peroxide (H2O2) product, it is subject to various electroactive interferences. PrB or ferric hexacyanoferrate has been referred to as an "artificial peroxidase", because it can enhance electron transport and catalyze the reduction of H2O2 at low overpotential30,31. Therefore, PrB-SPCE provides selective cathodic detection of H2O2 produced by the enzymatic reaction of UA. However, the PrB may decompose in neutral or weakly alkaline solutions32. Besides, saliva is a complex and difficult matrix to manage due to its high viscosity and protein assembly, as well as other electroactive species33. To improve the stability, selectivity and biocompatibility of PrB-SPCE, we introduced an external protective polymer membrane such as PPD on PrB-SPCE via electropolymerization. PPD membrane is known for its ability to penetrate low-molecular-weight compounds such as H2O2 and reject other electroactive species such as AA and AP, as well as prevent biofouling on the electrode28,34. To characterize the electrocatalytic property of PPD/ PrB-SPCE toward H2O2, we performed cyclic voltammetry measurements in artificial saliva with and without 1 mM H2O2 in the potential range of − 0.20 to + 0.40 V (vs. Ag pseudo-reference electrode) at a scan rate of 50 mV/sec. As shown in Fig. 2a, the PPD/PrB-SPCE exhibited the characteristic Prussian White (PrW)/PrB redox activity (0.02/0.13 V) in the artificial saliva solution. The cathodic peak current increased to − 12.3 μA at − 0.00 V in 1 mM H2O2 solution. To confirm the electrochemical performance of PPD/PrB-SPCE toward H2O2, the CA technique was used at an applied potential of − 0.1 V (vs. Ag pseudo-reference electrode). The selectivity of PPD/PrB-SPCE was confirmed by the current response of H2O2 in the presence of physiological levels of the relevant electroactive constituents of saliva including UA, AA, and AP. As shown in Fig. 2b and 2c, the interference currents due to UA (1000 μM), AA (500 μM), and AP (500 μM) were negligible, compared with the strong response due to H2O2 (50, 100, and 200 μM). In particular, the current responses of AA (− 0.12 ± 0.02 μA, [mean ± standard deviation]) and AP (− 0.06 ± 0.002 μA) on PPD/PrB-SPCE were significantly lower than those on PrB-SPCE (− 0.17 ± 0.01 μA for AA and − 0.14 ± 0.01 μA for AP, respectively). However, the cathodic current of H2O2 (− 0.35 μA ± 0.01 μA) on PPD/PrB-SPCE and PrB-SPCE (− 0.38 ± 0.01 μA) was similar. This result indicates that PPD/PrB-SPCE has high selectivity for the detection of H2O2 without any interference effect by possible electroactive species in saliva. In addition, the external PPD membrane did not inhibit the permeability of H2O2 toward PrB-SPCE./p>

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